
斑馬魚敲降CRISPRi法與MO(嗎啡啉)法比較
發(fā)布時(shí)間:
2019-06-26
一、基因敲降的前期準(zhǔn)備工作相同
1.1 生物信息學(xué)分析目標(biāo)基因在斑馬魚早期胚胎發(fā)送過程中是否有表達(dá)。
1.2 收集斑馬魚早期發(fā)育胚胎(通常為 48 hpf 前的胚胎),提取總 RNA,然后進(jìn)行體外轉(zhuǎn)錄(RT)。
1.3 設(shè)計(jì)檢測(cè)目標(biāo)基因表達(dá)的 PCR 引物,以 1.2 獲得的 cDNA 為模板,進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增,確認(rèn)目標(biāo)基因在早期有表達(dá)。
二、MO 法與 CRISPRi 法的敲降原理不同
2.1 MO 是在轉(zhuǎn)錄后水平上敲降基因的功能(MO-Spl 阻遏原始轉(zhuǎn)錄本的剪接,MO-Atg 阻遏成熟轉(zhuǎn)錄本的翻譯)(基因轉(zhuǎn)錄后調(diào)控)
2.2 CRISPRi 是在轉(zhuǎn)錄水平上敲降基因的功能(抑制基因的轉(zhuǎn)錄)(基因轉(zhuǎn)錄水平的調(diào)控)。
三、敲降工具有效性驗(yàn)證的方法不同
3.1 嗎啡啉敲降法(確認(rèn)有效性)的技術(shù)路線
抑制翻譯的 MO(MO-Atg)和抑制剪接的 MO(MO-Spl)二者敲降基因的有效性評(píng)價(jià)方法不同。抑制剪接的 MO(MO-Spl)的有效性評(píng)價(jià)方法是通過 RT-PCR 直接檢測(cè)原始mRNA轉(zhuǎn)錄本的正常剪接是否被改變;抑制翻譯的 MO(MO-Atg)的有效性評(píng)價(jià)通常需要通過蛋白質(zhì)印跡法進(jìn)行檢測(cè)。但是,由于適用于斑馬魚的抗體很少,過去一般通過報(bào)告基因法來進(jìn)行有效性評(píng)價(jià)(參見我們發(fā)表的論文 Dong et al., 2017. J Biol Chem. 292(31):13045-13055 ), 但后來斑馬魚領(lǐng)域給出的 MO 使用指南(見已發(fā)表的研究論文:Stainier et al., 2017. Plos Genetics, 13(10): e1007000)指出這種報(bào)告基因評(píng)價(jià)法缺乏特異性,因而不再推薦該報(bào)告基因評(píng)價(jià)方法。也正是由于沒有相應(yīng)比較方便的評(píng)價(jià)方法,一般不推薦此種抑制翻譯(MO-Atg) 的 MO 敲降法。確認(rèn)抑制剪接的 MO(MO-Spl)敲降基因有效性的技術(shù)路線如下:
3.1.1 分析斑馬魚目標(biāo)基因的基因組組成(外顯子-內(nèi)含子結(jié)構(gòu)),然后針對(duì)該基因,設(shè)計(jì)阻 遏原始轉(zhuǎn)錄本剪接的嗎啡啉(morpholino)(MO-Spl)。
注:MO-spl 不能阻止母源轉(zhuǎn)錄本的翻譯,如果要阻止母源轉(zhuǎn)錄本的翻譯,需要設(shè)計(jì)阻遏原始轉(zhuǎn)錄本翻譯的嗎啡啉(MO-Atg)。
3.1.2 訂購嗎啡啉 MO-Spl 或 MO-Atg 和標(biāo)準(zhǔn)對(duì)照 MO。
3.1.3 將不同濃度的 MO-Spl 注射入斑馬魚受精卵(標(biāo)準(zhǔn)對(duì)照 MO 僅注射最高濃度)
3.1.4 待注射胚胎發(fā)育至特定時(shí)期(優(yōu)選 48 hpf 前的某些時(shí)期),收集胚胎,提取總 RNA, 然后進(jìn)行體外轉(zhuǎn)錄(RT)。
3.1.5 按 1.3 已建立的方法進(jìn)行 RT-PCR 擴(kuò)增,確認(rèn)目標(biāo)基因的原始轉(zhuǎn)錄本的正常剪接是否被阻遏(發(fā)生異常剪接)。同時(shí),設(shè)置檢測(cè)管家基因表達(dá)作為內(nèi)參對(duì)照,確認(rèn)整個(gè) RT-PCR 過程正常。
注:如果是使用 MO-Atg,則無簡(jiǎn)單易行的有效性檢測(cè)方法(一般不做有效性檢測(cè),僅開展特異性檢測(cè))。
3.1.6 分析 3.1.5 的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定 MO 敲降工具的有效性,以及實(shí)現(xiàn)有效敲降的最低注射濃度。
3.2 CRISPRi 敲降法(確認(rèn)有效性)的技術(shù)路線
CRISPRi 敲降的有效性可以通過RT-PCR 法檢測(cè)目標(biāo)基因表達(dá)水平是否被有效下調(diào)來進(jìn)行直接評(píng)價(jià)。一般使用普通半定量 RT-PCR 即可,確有需要,可以考慮定量 RT-PCR 法確認(rèn)敲降程度。
3.2.1 分析目標(biāo)基因的基因組結(jié)構(gòu),確定目標(biāo)基因轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)和/或 5’UTR 位置。 根據(jù)目標(biāo)基因的轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)的特征,設(shè)計(jì) sgRNA 識(shí)別位點(diǎn)---CRISRP 序列的設(shè)計(jì)(不少于 4 個(gè))。
3.2.2 體外合成至少 4 條不同的 sgRNA(每基因)和 dCas9-Eve mRNA。
3.2.3 將 4 條 sgRNA 按不同濃度和 dCas9-Eve mRNA 混合后共同注射斑馬魚受精卵。同時(shí)以相同濃度的 dCas9-Eve mRNA 注射受精卵作為空白對(duì)照。
3.2.4 待注射胚胎發(fā)育至特定時(shí)期(優(yōu)選 48 hpf 前的某些時(shí)期),收集胚胎,提取總 RNA, 然后進(jìn)行體外轉(zhuǎn)錄(RT)。
3.2.5 按 1.3 已建立的方法進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增,確認(rèn)目標(biāo)基因的表達(dá)水平是否被有效抑制(阻遏轉(zhuǎn)錄)。同時(shí),設(shè)置檢測(cè)管家基因表達(dá)作為內(nèi)參對(duì)照,確認(rèn)整個(gè) RT-PCR 過程正常。
3.1.6 分析 3.2.5 的實(shí)驗(yàn)結(jié)果,確定 CRISPRi 敲降工具的有效性,以及實(shí)現(xiàn)有效敲降的最低注射濃度。
四、CRISPRi 敲降方法的特異性優(yōu)于 MO 法的特異性
基因敲降方法的特異性需要通過表型拯救的方法來回答。之所以需要表型拯救,是因?yàn)?/span>需要排除基因敲降的表型是由于敲降工具的脫靶或者敲降試劑本身的毒性而導(dǎo)致的非特異 表型,換句話說,要排除敲降表型是源于基因敲降工具的脫靶或者試劑本身的毒性所造成的 這種可能。拯救的基本實(shí)驗(yàn)策略是:在基因敲降的基礎(chǔ)上,過表達(dá)被敲降的基因(通常是同時(shí)顯微 注射目標(biāo)基因的戴帽 mRNA),然后觀測(cè)原來出現(xiàn)的表型是否被恢復(fù)(或有所恢復(fù))至正常(參見我們發(fā)表的論文 Dong et al., 2017. J Biol Chem. 292(31):13045-13055 )。如果基因敲降的表型在過表達(dá)目標(biāo)基因的 mRNA 后有很好的拯救,那么可以確認(rèn)敲降方法是特異的?;?/span>于基因組編輯技術(shù)的 CRISPRi 敲降方法,一般同時(shí)注射 4 個(gè) sgRNA + dCas9-Eve mRNA。先前的很多研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn),單個(gè) sgRNA 引導(dǎo) dCas9-Eve 所發(fā)揮的抑制基因表達(dá)的功能遠(yuǎn)沒有多個(gè) sgRNA 同時(shí)引導(dǎo) dCas9-Eve 發(fā)揮的抑制功能強(qiáng)(參見我們發(fā)表的論文 Dong et al., 2017. J Biol Chem. 292(31):13045-13055 ),這種多個(gè) sgRNA 的協(xié)同作用決定了CRISPRi法脫靶作用可以忽略,而 RNA 本身的毒副作用是完全可以進(jìn)行對(duì)照的(使用一組僅注射dCas9-Eve mRNA 作為對(duì)照)。相對(duì)而言,MO 的脫靶效應(yīng)要大很多。事實(shí)上,有實(shí)驗(yàn)證據(jù)表明:即使有多達(dá) 5 bp 的錯(cuò)配,MO 也會(huì)發(fā)生作用。而對(duì)于一個(gè) 25 nt 長(zhǎng)的 MO 而言,5 bp 錯(cuò)配在基因組中的類似序列可以是成白上千。因此,MO 敲降的脫靶機(jī)會(huì)很大。
另外,有研究報(bào)道注射 MO 可異常激活斑馬魚 p53 基因的表達(dá),非特異性地誘導(dǎo)胚胎細(xì)胞凋亡,因此,在很多情況下,如果使用 MO 作基因敲降,是需要同時(shí)注射敲降 p53 基因的MO 以抑制過表達(dá)的p53(請(qǐng)參考已發(fā)表的文獻(xiàn) Robu et al., 2007. PLoS Genet. 3(5):e78)。
再者,如果 MO 自身就存在毒性(源于序列本身或者化學(xué)合成過程),則是無法進(jìn)行對(duì)照的。MO 方法剛發(fā)明不久,就有研究指出即使是同一種序列,不同批次合成的產(chǎn)品的毒性也可能是不一樣的,顯然,這種“內(nèi)在”的毒性是無法進(jìn)行對(duì)照的。
五、CRISPRi 敲降工具(RNA 形式)供貨周期遠(yuǎn)短于 MO 敲降工具
由于 MO 工具需要在美國(guó)合成,受進(jìn)口手續(xù)、海關(guān)通關(guān)等的影響,到貨時(shí)間一般不少于 30 個(gè)工作日。而 CRISPRi 敲降工具(RNA 形式)完全有本公司自主生產(chǎn)(已申請(qǐng)國(guó)家發(fā)明專利,專利申請(qǐng)?zhí)枺?/span>201610843834.8),不超過 20 個(gè)工作日(一般為 10 個(gè)工作日)即可制作好,干冰寄送(到貨)。
六、CRISPRi 敲降工具(RNA 形式)的費(fèi)用低于 MO 法的敲降工具七、優(yōu)先推薦 CRISPRi法敲降斑馬魚基因
一般來說,一個(gè)基因的敲降方法如果尚未見報(bào)道的話,僅以一個(gè) MO 敲降的話,未來發(fā)表論文時(shí),審稿人一般會(huì)要求需要再有一個(gè)獨(dú)立敲降的方法重復(fù)前一個(gè) MO 的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。其原因也非常簡(jiǎn)單,因?yàn)榛蚴欠癖怀晒η媒凳茄芯炕蛉笔Чδ艿那疤帷V挥写_認(rèn)基因本身被成功特異敲降,才能開始后續(xù)的功能研究(表型分析)。在不確定敲降方法是否有效且特異的情況下,所有獲得的結(jié)果毫無疑問都是值得存疑的。
因此,我們推薦使用 CRISPRi + MO 法同時(shí)進(jìn)行敲降同一個(gè)基因(參見我們發(fā)表的論文 Dong et al., 2017. J Biol Chem. 292(31):13045-13055)。在使用兩種獨(dú)立的、原理完全不同的敲降方法后,如果得到的敲降效果(表型)是一樣的,那么這樣建立的基因敲降方法毫無疑問可以被認(rèn)可是有效且特異的。如果一定只想先選用一種基因敲降方法篩選初步評(píng)價(jià)基因缺失功能,我們優(yōu)先推薦CRISPRi 法,理由如前述(有效性高、脫靶機(jī)會(huì)小、毒副作用小、供貨周期短、價(jià)格便宜)。